mRNA技术作为一种新兴的生物技术,展现出巨大的应用潜力。从mRNA疫苗到mRNA药物,环亚集团·AG88致力于推动这一技术的发展,为疾病的预防和治疗提供全新的思路。然而,mRNA技术的进步并非一帆风顺,最大的挑战之一便是副产物双链RNA(dsRNA)的形成。dsRNA是一种具有免疫刺激作用的分子,可能引发机体的免疫反应,进而影响mRNA的安全性和有效性。因此,减少dsRNA的产生已成为mRNA技术领域亟待解决的关键问题。
传统的解决方案通常依赖繁琐的纯化工艺,但这些方法费用高、效率低且难以彻底去除微量的dsRNA。作为mRNA体外转录(IVT)的关键工具,T7RNA聚合酶(T7RNAP)的天然活性,如末端转移酶和RNA依赖的RNA聚合酶活性,被视为dsRNA形成的重要因素。如何通过定向进化或理性设计对T7RNAP进行改造,已成为全球科研团队关注的焦点。
2024年3月3日,我们团队在FEBS Journal上发表了一项题为《Engineered T7 RNA polymerase reduces dsRNA formation by lowering terminal transferase and RNA-dependent RNA polymerase activities》的研究论文。研究结果表明,我们成功地通过工程化改造T7RNAP,显著降低了体外转录过程中dsRNA的生成,仅为野生型的18%,同时大幅提升了合成mRNA的整体效率和质量。这一进展为基因治疗和疫苗开发领域的跨越式发展奠定了基础。
在本研究中,我们创新性地结合了定向进化和半理性设计的方法,筛选出多个高效且低毒的T7RNAP突变体。这些突变体在减少dsRNA形成方面表现优异。我们构建了随机突变库,设计了一种可实时监测液滴内RNA产物的完整性与dsRNA含量的分子信标探针系统,在荧光激活液滴分选(FADS)技术的帮助下,实现了超高通量筛选。最终,选出了关键候选突变体Mut1(V214A)和Mut7(F162S/A247T),其产生的dsRNA含量显著低于野生型。
此外,通过半理性设计方法,我们构建了十个单点饱和突变库,并借助微孔板筛选技术识别出具有潜在价值的突变体。在筛选过程中,使用了双探针技术,以增加5'-end探针的RNA产量检测。在筛选超过1000个突变体后,发现关键候选突变体Mut11(K180E)和Mut14(A70Q)的dsRNA产生量显著低于野生型,同时未对转录效率产生负面影响。
为进一步优化,我们基于上述突变位点构建了DNA重排文库,并通过微孔板筛选,最终获得了组合突变体M17(A70Q/F162S/K180E)。进一步实验结果显示,M17的dsRNA含量仅为野生型的18%,在筛选体系中仅测得0007ng/μg。这一结果不仅在体外实验中得到了验证,在细胞实验中也显示出显著的免疫原性降低,以及蛋白翻译效率提高。我们将突变体转录的mRNA导入RAW264.7细胞后,观察到最优突变体M11所产生的干扰素β(IFN-β)相关mRNA和蛋白表达量分别为野生型的97%和1293pg/mL。在HEK293细胞中,突变体mRNA的EGFP表达细胞数显著增加且荧光强度稳定。这一结果表明,减少dsRNA的生成能够有效解除PKR介导的翻译抑制,释放mRNA治疗的潜力。
为深入探讨突变体降低dsRNA的作用机制,我们通过计算机模拟与功能实验揭示,突变体的dsRNA减少主要是由于其降低了RNA依赖的RNA聚合酶(RDRP)活性和末端转移酶活性。这一发现为未来进一步优化T7RNAP提供了重要的理论依据。
本研究为T7RNAP的改造提供了新的方法和思路,也为mRNA技术的发展注入了新的活力。通过减少dsRNA的形成,提升了mRNA的质量和安全性。依托此研究成果,环亚集团·AG88成功推出了一款大幅降低dsRNA含量的GMP级别T7RNAP产品(Cat#10629,CleascripT7RNA Polymerase GMP-grade (low dsRNA, 250U/μL))。该产品在mRNA疫苗、mRNA药物等多个领域展现出广泛的应用潜力,预示着mRNA技术的进一步蓬勃发展,也为生物医学领域带来了更多的可能性。
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